引言
在早期胚胎發育過程中，胚胎着床是一個極為關鍵的生物學事件。期間胚胎植入母體子宮，建立母胎交流界面，這是後續發育的基礎。然而這一過程充滿風險，臨床上常常出現因着床失敗導緻的生育問題。由于該過程極為瞬時和動态，胚胎着床方面的研究仍是一個“黑匣子”。
miRNA是真核生物中保守的轉錄後調控機制，并在着床過程中起到重要作用。DGCR8是miRNA合成通路的核心蛋白，它與DROSHA一起組成Microprocessor複合體，切割pri-miRNA上的莖環結構形成pre-miRNA, pre-miRNA再進一步被加工為成熟的miRNA。【1】DCGR8敲除後，胚胎無法發育至着床後階段，暗示着DGCR8在着床過程中起到重要作用，然而該緻死表型卻不能完全用miRNA的缺陷來解釋。【2, 3】
與尚不清楚的着床期過程相比，人們對于着床前胚胎和着床後的胚胎已有廣泛的研究，這主要得益于體外幹細胞模型的建立。由着床前胚胎分離得到的幹細胞被稱為naïve mESCs（小鼠胚胎幹細胞），而着床後胚胎分離得到的幹細胞被稱為Formative/Primed mESCs，這幾種細胞已被廣泛應用各種發育問題的研究。【4, 5】杜鵬課題組在2018年捕捉到了一種介于naive和Formative/primed多能性的中間态多能性幹細胞，稱為Poised mESCs。【6, 7】該狀态代表了處于着床期的胚胎，且由一組特異的miRNA所調控。
2024年7月1日，北京大學杜鵬課題組在Molecular cell雜志線上發表了題為：A transient transcriptional activation governs unpolarized-to-polarized morphogenesis during embryo implantation的研究論文，發現由DGCR8/FLII/JUN介導的瞬時轉錄激活事件調控着床期胚胎的形态轉變。
在本研究中，研究者運用naïve-poised-formative/Primed等幹細胞模型，結合實驗室先前在miRNA調控方面的研究基礎，解釋了驅動着床期胚胎形狀建成的分子驅動力，主要内容概括如下：
1.DGCR8作為miRNA合成通路的核心蛋白，可以發揮不依賴于miRNA的轉錄抑制的非經典功能。在naïve mESCs中（代表着床前胚胎），DGCR8可以結合位于mRNA上短的莖環結構，招募并隔離轉錄激活子FLII，抑制轉錄進行。在Poised mESCs中（代表着床中胚胎），ERK通路瞬時激活，使得FLII受到磷酸化修飾并與DGCR8解離，進而與轉錄因子JUN結合并激活細胞遷移基因的轉錄。着床後ERK通路迅速失活（Formative mESCs），DGCR8重新結合并抑制FLII。是以DGCR8/FLII/JUN在ERK通路的介導下，在着床期特異地介導了一個瞬時轉錄激活事件的發生（圖1）。
2.該轉錄激活事件控制了胚胎着床期由無序狀态到極化狀态的形态轉變。且該事件在人和小鼠是保守的（圖1）。
圖1: 在着床前(naive)-着床中(Poised)-着床後(Formative)發育過程中，DGCR8/FLII/JUN在ERK通路調控下介導瞬時轉錄激活事件的發生，進而調控着床期胚胎形态轉變。(Credit: Molecular cell)
本研究具體結論如下：
一：在naïve mESCs中， DGCR8通過結合mRNA上的莖環結構，招募并抑制轉錄激活子FLII。
基于前期的naïve小鼠胚胎幹細胞中DGCR8互作蛋白資料/Co-IP/Pull down，作者發現，DGCR8與轉錄激活子FLII存在直接的蛋白互相作用。然而FLII并不參與miRNA合成通路。通過比較多種細胞系的轉錄組，作者發現傳統的miRNA調控基因在敲除Dgcr8和Dicer這兩個對于miRNA合成必需的基因後，由于miRNA整體缺失，都會出現整體上調的情況。另一大類基因隻在Dgcr8敲除後上調，在Dicer敲除後則沒有表型,這證明這部分基因不受miRNA的調控。在Dgcr8敲除的基礎上敲除Flii (DF-dKO mESCs)，這部分基因的上調被消除。綜合其他結果說明：DGCR8和FLII共同在轉錄水準上控制了一組不受miRNA調控的基因，該類基因主要參與細胞遷移等活動，稱為非miRNA靶向基因。DGCR8和FLII對于這類基因起到相反的調控作用，DGCR8抑制，而FLII則激活這類基因的表達。
為了進一步研究DGCR8如何抑制這類基因的轉錄，在naïve小鼠胚胎幹細胞中，作者通過eCLIP實驗鑒定了DGCR8/FLII的RNA結合靶點，同時在eCLIP實驗中還摻入了S4U，可以同時鑒定出新生的RNA （nascent RNA）。作者發現DGCR8和FLII同時結合了大量的靶基因的新生mRNA，且DGCR8結合區域傾向于形成莖環結構。該莖環結構顯著短于pri-miRNA上的莖環結構，并不能被DGCR8和DROSHA形成的複合體結合并切割。通過敲除DGCR8所結合的位于靶基因mRNA上的莖環結構，靶基因的轉錄抑制狀态被解除。這證明DGCR8确實通過結合mRNA上的莖環結構來抑制轉錄。
綜上，這說明DGCR8一方面和DROSHA結合負責pri-miRNA的切割，一方面結合在靶基因mRNA上的莖環結構，招募并抑制轉錄激活子FLII，進而抑制轉錄的進行。
二：FLII在naïve-poised-formative多能性轉變過程中促進一組細胞遷移相關基因的激活及Poised多能性的建立。
在naïve-poised-formative（着床前→着床中→着床後）轉變體系中，作者發現：與正常細胞相比，缺失FLII的細胞在該過程中逐漸死亡，說明FLII對于該過程是必需的。轉錄組分析發現：FLII的缺失并不影響細胞退出naïve多能性，而是特異的影響了Poised時期特異的細胞遷移相關基因的激活。進一步的，細胞也無法正常繼續發育到formative多能性。綜上結果說明：盡管FLII在naïve時期沒有轉錄激活活性，但它在Poised時期重新獲得了轉錄激活活性，并激活了一組細胞遷移相關基因的表達，促進Poised多能性的建立。這一過程對于随後轉變到Formative多能性也是必需的。
三：FLII在Poised mESCs(代表着床期胚胎)中與DGCR8解離，并與轉錄因子JUN結合，激活Poised特異的細胞遷移基因。
特異地，FLII在Poised時期解除了與DGCR8的互作，同時也不再結合靶基因的mRNA 。這說明FLII與DGCR8的解離是FLII具有轉錄激活活性的關鍵條件。通過一系列生化實驗，作者證明naïve-poised轉變過程中，ERK通路瞬時激活，磷酸化FLII，使得FLII與DGCR8不再結合。同時磷酸化的FLII會與轉錄因子JUN互作增強。通過抑制MEK/ERK通路，DGCR8/FLII的解離得到阻止，而FLII/JUN的形成則被抑制。
為了進一步探究JUN是否和FLII一起促進了Poised多能性的建立，作者建構了Jun敲除與過表達的細胞系以探究JUN在多能性轉變中的作用。結果發現: 與Flii類似，Jun的敲除同樣影響了細胞遷移基因的激活，導緻Poised多能性無法建立，并進一步影響到了formative多能性的建立。相反的是, Jun 過表達顯著增強細胞遷移基因的表達，并延長了其表達時間，最終導緻Poised多能性的持續時間延長，阻止了進一步發育至formative多能性。
四：FLII促進JUN對DNA的結合，進而激活細胞遷移基因并建立Poised多能性。
作者進一步探究了FLII在JUN激活基因表達中的作用，作者在多種細胞系中進行了CUT&Tag實驗，結果發現: JUN廣泛的結合在Poised時期激活的細胞遷移基因的啟動子/增強子上，且Flii缺失後，JUN幾乎完全喪失了DNA結合能力，此外，FLII過表達可以顯著增強JUN的結合能力。以上結果說明FLII通過促進JUN對DNA的結合來實作轉錄激活作用。
五：Poised 多能性幹細胞代表小鼠和人的着床期胚胎的上胚層細胞，這一時期的胚胎正經曆無序到極化的形态轉變。
通過與體内胚胎的轉錄組比較，作者發現Poised ESCs的轉錄組與小鼠與人的着床期胚胎轉錄組最為相似（小鼠為E4.75天，人為E8天）。這一時期胚胎的上胚層細胞逐漸從無序狀态變成玫瑰花環樣的極化結構。且在體外培養的着床期小鼠胚胎中，能夠觀察到JUN和其他靜息态多能性标記基因的表達，進一步證明了已有結論。通過體外的模拟無序到極化的形态轉變體系，作者發現抑制該轉錄激活事件都會導緻無序到極化結構形态轉變的失敗。是以，本文中鑒定到的轉錄激活事件對應于着床期胚胎，而激活基因以細胞遷移相關基因為主，則對應着這一時期細胞的形态轉變。
綜上，該研究發現了DGCR8獨立于miRNA之外的轉錄抑制功能，并與FLII/JUN一起，在ERK通路的控制下，控制了着床期的瞬時轉錄激活事件，進而控制這一時期的形态建成。
參考文獻
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責編|探索君
排版|探索君
文章來源|“BioArt”
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