細胞複蘇的操作步驟及注意事項

平時研究用的細胞，有需要冷凍儲存。冷凍的過程稱為凍存，把凍上的細胞化開的過程叫細胞複蘇。細胞複蘇是一簡單的試驗操作，但操作中有許多需要注意的事項，在實驗操作中注意細小問題，才能使複蘇後的細胞狀态保持良好。

細胞複蘇實驗準備：

主要器材：一次性滴管、打火機、酒精燈、大鑷子、中鑷子、記号筆、廢液缸、封口膜、剪子。

主要試劑：PBS、培養液、消化酶（胰酶）、75%酒精、雙抗。

PBS配制：NaCL :4g KCL:0.1g Na2HPO4 :1.745g KH2PO4 :0.1g

三蒸水：500mL，溶解後高壓滅菌。 培養基配制：5mL雙抗、50mL血清，加入培養基中。

細胞複蘇操作步驟：

1.佩戴眼鏡和手套，從液氮罐中取出安瓿或冷凍管。

2.迅速放入38℃水浴中，并不時搖動，在1分鐘内使其完全融化，然後在無菌下取出細胞。

3.在1000r/min速度下離心5～10分鐘，棄去上層液，加入适量培養液後接種于培養瓶中，接種濃度1×109/L，置37℃溫箱靜置培養，次日更換一次培養液，繼續培養，觀察生長情況。若細胞密度較高，及時傳代。或無需離心直接将細胞加入瓶中，并加入培養基貼壁培養12～24小時後，充去上清，換入新鮮培養基繼續培養。

細胞複蘇的注意事項：

1.細胞複蘇時要注意融化凍存細胞的應注意融化凍存細胞速度要快，可不時搖動安瓿或冷凍管，使之盡快通過最易受損的溫度段(-5～0℃)。

2.凍存液對細胞有毒性，解凍後必須用Dhanks洗兩遍才能移入培養瓶中培養。培養液中血清不能太少。

3.從液氮拿出來，以最快速度丢入37度水浴，等細胞液剛剛化完取出，加培養液稀釋。這樣可以避免複蘇過程中細胞液中有冰晶的出現，冰晶會破壞細胞膜及細胞内部結構的。

4.剛複蘇的細胞還是少折騰它好，細胞37°快速解凍後直接放入預熱的培養基。

5.DMSO在4度以下對細胞無毒，4度以上有毒；複蘇必須盡快除去。要記得慢凍速溶！

6.取細胞的過程中注意帶好防凍手套，護目鏡。細胞凍存管可能漏入液氮，解凍時凍存管中的氣溫急劇上升，可導緻爆炸。

7.常溫下二甲基亞砜（DMSO）對細胞的毒副作用較大，是以，必須在1-2 min内使凍存液完全融化。如果複蘇溫度太低，會造成細胞的損傷，是以選擇40℃複蘇。

8.貼壁細胞複蘇實驗标準流程是将解凍後的細胞懸液先進行離心，以去除冷凍保護液DMSO對細胞的損傷，但是離心也會對剛複蘇的狀态欠佳的細胞産生損傷。也有的實驗操作是将解凍後的細胞懸液先直接吹打均勻後分裝到培養瓶中進行培養，第二天換液。這可能使培養基中少量的DMSO對細胞造成損傷。

細胞複蘇後貼壁細胞較少的原意有哪些：

1.凍存細胞的時候是不是消化時間過長，這是一般人注意不到的地方，要知道太長的消化時間會使細胞複蘇時失去貼壁能力。

2.有可能是細胞凍存液的品質，細胞凍存液的品質不好也會導緻細胞死亡。

3.凍存液的量加的是不是太多，ATCC推薦是不超過7%，大于5%，太多也不好。

4.凍存的時候是不是把DMSO混均勻，這個有一些影響，但不算太大。

5.凍存時溫度梯度是不是把握嚴格，很多人容易忘卻這個事情，因為這個東西流程長。

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